关于实验一神经干动作电位第1页，共25页，星期日，2025年，2月5日
实验一
神经干动作电位的引导及传导速度和不应期的测定
第2页，共25页，星期日，2025年，2月5日【实验目的】
1.学习和掌握制备蛙类神经干制作方法。
2.①学习使用BL-420生物机能实验系统引导蛙类坐骨神经干动作电位的方法。
②分析神经干动作电位的基本波形、幅值、时程，测定神经兴奋的传导速度和不应期。
第3页，共25页，星期日，2025年，2月5日【实验原理】神经干动作电位是神经兴奋的客观标志。它是由粗细不等、兴奋性不同的神经纤维所组成的，故在神经干表面记录的动作电位为复合性动作电位。这种电位的幅度在一定范围内可随刺激强度的增加而加大。第4页，共25页，星期日，2025年，2月5日处于兴奋部位的膜外电位负于静息部位，当神经冲动通过后，该处的电位又恢复到静息水平，这一可扩布的、一过性的电位变化，即动作电位。如果将两个引导电极分别置于神经干表面，当神经干一端兴奋时，兴奋波先后通过两个引导电极处，记录到两个方向相反的电位偏转波形，称为双向动作电位。第5页，共25页，星期日，2025年，2月5日【实验对象】蟾蜍或蛙
【实验器材】蛙类手术器械（粗剪刀，眼科剪，手术剪，镊子，探针，蜡盘，玻璃分针，大头针，）培养皿，神经屏蔽盒，引导线，刺激电极，任氏液，BL-420生物机能实验系统，废液缸，张力换能器。第6页，共25页，星期日，2025年，2月5日【实验步骤】
1.制备坐骨神经腓神经标本
（1）破坏脑脊髓
（2）剪除躯干上部及内脏
（3）剥皮及分离下肢
（4）制备坐骨神经-腓神经标本。
第7页，共25页，星期日，2025年，2月5日第8页，共25页，星期日，2025年，2月5日第9页，共25页，星期日，2025年，2月5日第10页，共25页，星期日，2025年，2月5日第11页，共25页，星期日，2025年，2月5日第12页，共25页，星期日，2025年，2月5日2.仪器连接
（1）开机并启动BL-420生物机能实验系统
（2）本实验采用双通道记录，将两对引导电极分别与通道1和通道2连接，刺激电极连接至刺激器输出接口。
连接方法如见图：第13页，共25页，星期日，2025年，2月5日BL-420生物机能实验系统神经屏蔽盒CH1CH2刺激输出刺激电极地线C1C2C3C4仪器连接示意图第14页，共25页，星期日，2025年，2月5日第15页，共25页，星期日，2025年，2月5日（3）将坐骨神经—腓神经标本放入神经屏蔽盒（坐骨神经中枢端放在刺激电极上，外周端放在引导电极上）。第16页，共25页，星期日，2025年，2月5日【实验项目】1、观察细胞外引导双相动作电位的波形特点、测定幅值及时程。2、测定神经干动作电位传导速度。3、测定不应期：记下第二个动作电位刚消失时的两个刺激脉冲之间的波间隔，此时的波间隔值即为绝对不应期。用不应期减去绝对不应期即可得出相对不应期第17页，共25页，星期日，2025年，2月5日【结果分析】1.解释双相动作电位产生的机制，记录动作电位的时程、幅值。(3)2.测定神经干动作电位传导速度:V=ΔS/ΔT(m/s)。（4）3.动作电位不应期的测量（5）4.刺激强度与复合动作电位幅值的关系（6）第18页，共25页，星期日，2025年，2月5日【注意事项】1.破坏蟾蜍的脑和脊髓时，应防止其耳后腺及皮肤分泌的蟾酥毒液射入操作者的眼内或污染实验标本。2.制备神经标本过程中，应避免用手捏神经或镊子夹伤神经。3.为了防止神经标本干燥，制备过程中需不断滴加任氏液，使其保持良好的兴奋性。第19页，共25页，星期日，2025年，2月5日****